重組酶混合液:是無縫克隆試劑盒的關(guān)鍵成分,包含多種具有特定功能的重組酶,如外切酶、單鏈結(jié)合蛋白和 DNA 聚合酶等 。外切酶能夠從 DNA 雙鏈的末端進(jìn)行切割,產(chǎn)生 3' 單鏈末端,使目的基因和載體的同源序列得以暴露;單鏈結(jié)合蛋白則結(jié)合在單鏈 DNA 上,防止其重新退火,并穩(wěn)定單鏈結(jié)構(gòu);DNA 聚合酶在重組反應(yīng)的最后階段,填補(bǔ)缺口并連接 DNA 片段,完成目的基因與載體的無縫連接 。這些重組酶經(jīng)過優(yōu)化配比,在特定的反應(yīng)緩沖體系中協(xié)同作用,確保重組反應(yīng)高效進(jìn)行。
反應(yīng)緩沖液:為重組酶提供適宜的反應(yīng)環(huán)境,包含維持酶活性所需的各種離子(如鎂離子)、緩沖物質(zhì)(如 Tris - HCl)以及穩(wěn)定成分 。其中,鎂離子是重組酶發(fā)揮活性的關(guān)鍵輔助因子,其濃度的精確控制對反應(yīng)效率至關(guān)重要;Tris - HCl 緩沖體系能夠維持反應(yīng)過程中 pH 值的穩(wěn)定,保證重組酶在最適 pH 條件下工作;穩(wěn)定成分則有助于保護(hù)重組酶的結(jié)構(gòu)和活性,延長其使用壽命,確??寺》磻?yīng)的穩(wěn)定性和可靠性 。
陽性對照:通常包含已知的目的基因片段和線性化載體,用于驗證無縫克隆試劑盒的有效性和實驗操作的準(zhǔn)確性 ??蒲腥藛T在進(jìn)行正式實驗前,可先使用陽性對照進(jìn)行預(yù)實驗,若陽性對照能夠成功實現(xiàn)克隆,說明試劑盒和實驗操作流程均正常,可繼續(xù)開展后續(xù)實驗;若陽性對照失敗,則需檢查實驗條件或試劑盒是否存在問題,及時調(diào)整優(yōu)化,避免浪費樣本和時間 。
引物設(shè)計與 PCR 擴(kuò)增:根據(jù)目的基因和線性化載體的序列,使用專業(yè)的引物設(shè)計軟件(如 Primer Premier)設(shè)計帶有同源臂的 PCR 引物 。同源臂長度一般為 15 - 25 bp,需確保其與線性化載體末端序列準(zhǔn)確互補(bǔ)。以目的基因模板進(jìn)行 PCR 擴(kuò)增,獲得兩端帶有同源臂的目的基因片段 。擴(kuò)增完成后,通過瓊脂糖凝膠電泳對 PCR 產(chǎn)物進(jìn)行檢測,確保片段大小正確,并使用 DNA 純化試劑盒對 PCR 產(chǎn)物進(jìn)行純化,去除引物、dNTP 等雜質(zhì) 。
載體線性化:根據(jù)載體類型選擇合適的方法進(jìn)行線性化。對于含有單一限制性內(nèi)切酶識別位點的載體,可使用相應(yīng)的限制性內(nèi)切酶進(jìn)行酶切;對于無合適酶切位點的載體,可通過 PCR 擴(kuò)增的方式制備線性化載體 。酶切或 PCR 擴(kuò)增后,同樣通過瓊脂糖凝膠電泳分離線性化載體,并進(jìn)行純化,去除未線性化的載體和其他雜質(zhì) 。
無縫克隆反應(yīng):按照試劑盒說明書的比例,將純化后的目的基因片段、線性化載體和無縫克隆反應(yīng)組分(重組酶混合液、反應(yīng)緩沖液等)加入離心管中,輕輕混勻 。將反應(yīng)體系置于適宜溫度(如 50℃)的恒溫設(shè)備中孵育 30 分鐘 - 1 小時,使重組酶催化目的基因與載體發(fā)生同源重組反應(yīng),實現(xiàn)無縫連接 。
轉(zhuǎn)化與篩選:將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化至感受態(tài)細(xì)胞(如 DH5α 等)中,通過熱激或電轉(zhuǎn)等方法使細(xì)胞攝取連接產(chǎn)物 。將轉(zhuǎn)化后的細(xì)胞涂布于含有相應(yīng)抗生素的固體培養(yǎng)基上,培養(yǎng)過夜,篩選出含有重組質(zhì)粒的陽性克隆 ??赏ㄟ^菌落 PCR、限制性內(nèi)切酶酶切鑒定或 DNA 測序等方法進(jìn)一步驗證陽性克隆的正確性 。
引物設(shè)計準(zhǔn)確性:引物設(shè)計是無縫克隆成功的關(guān)鍵步驟之一。確保同源臂序列與線性化載體末端互補(bǔ),避免出現(xiàn)堿基錯配,否則會影響重組反應(yīng)效率 。同時,引物的 Tm 值、GC 含量等參數(shù)也需合理設(shè)計,保證 PCR 擴(kuò)增的特異性和效率 。設(shè)計完成后,可使用在線工具或軟件對引物進(jìn)行分析和優(yōu)化,必要時進(jìn)行預(yù)實驗驗證引物的有效性 。
DNA 純化質(zhì)量:目的基因片段和線性化載體的純化質(zhì)量直接影響無縫克隆反應(yīng)。若純化不,殘留的引物、dNTP、限制性內(nèi)切酶等雜質(zhì)會干擾重組酶的活性,降低克隆效率 。因此,需嚴(yán)格按照 DNA 純化試劑盒的操作說明進(jìn)行純化,通過瓊脂糖凝膠電泳和分光光度計檢測等方法確保純化后的 DNA 純度和濃度符合要求 。
反應(yīng)條件優(yōu)化:不同的目的基因和載體組合,可能需要對無縫克隆反應(yīng)的溫度、時間等條件進(jìn)行優(yōu)化 。在進(jìn)行新的實驗時,建議設(shè)置溫度梯度(如 45℃ - 55℃)和時間梯度(如 20 分鐘 - 90 分鐘)進(jìn)行預(yù)實驗,摸索最佳反應(yīng)條件 。同時,注意反應(yīng)體系的體積和各組分的比例,避免因體系過大或過小、組分比例不當(dāng)影響反應(yīng)效果 。
陽性克隆驗證:雖然無縫克隆試劑盒具有較高的陽性克隆率,但仍需對篩選出的陽性克隆進(jìn)行充分驗證。菌落 PCR 可快速初步判斷克隆是否正確,但存在一定的假陽性率,因此需結(jié)合限制性內(nèi)切酶酶切鑒定或 DNA 測序等方法進(jìn)行準(zhǔn)確驗證 。DNA 測序是確認(rèn)克隆正確性的金標(biāo)準(zhǔn),能夠精確檢測目的基因與載體的連接序列是否準(zhǔn)確無誤 。